核心期刊论文发表油茶籽壳总黄酮的提取

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摘要：摘要：研究油茶籽壳中总黄酮类物质的提取工艺，探讨影响提取率的主要因素，通过正交试验确定最佳提取工艺。通过DPPH法﹑FRAP法﹑OH清除能力3个体系对不同溶剂提取物的体外抗氧化能力进行研究。试验结果表明：在30倍样重的60%乙醇中浸泡后，40℃下超声波辅助

　　摘要：研究油茶籽壳中总黄酮类物质的提取工艺，探讨影响提取率的主要因素，通过正交试验确定最佳提取工艺。通过DPPH法﹑FRAP法﹑·OH清除能力3个体系对不同溶剂提取物的体外抗氧化能力进行研究。试验结果表明：在30倍样重的60%乙醇中浸泡后，40℃下超声波辅助萃取45 min，油茶籽壳中的总黄酮提取率为1.71%。此外，不同溶剂提取物中黄酮提取率差异很大。在DPPH体系中，油茶籽壳60%乙醇提取物的IC50为781μg/mL，清除能力强于其它溶剂提取物与对照品竹叶提取物(IC50为1 025μg/mL，主要成分为竹叶黄酮)(P<0.05);60%乙醇提取物的FRAP值为1.79 mmol/L，显示出与竹叶提取物相当的还原能力;在清除羟自由基(·OH)体系中，样品质量浓度为500μg/mL时，乙醇提取物的清除效果与竹叶提取物相当;当样品质量浓度为1 000μg/mL时，乙醇提取物的清除效果稍弱于竹叶提取物。

　　关键词:油茶籽壳;总黄酮;提取溶剂;抗氧化 核心期刊论文

　　油茶(camellia oleifera)是我国特有的木本食用油料树种[1]，其果实油茶籽生长周期长，从开花到采摘，历经冬﹑春﹑夏﹑秋四季，民间素有“抱子怀胎”之称。茶果中，茶蒲占60.0%~61.3%，茶籽占38.7%~40%，茶籽中壳占30.6%~34%，茶仁占66.0%~69.4%。我国油茶资源十分丰富，据统计，全国有油茶36.67万hm2(5 500万亩)[2]，每年产油150万t，这将带来1 000多万t的油茶籽壳。如此庞大的数量的副产物，若能加以有效利用，将能产生巨大的经济效益。国外曾有从油茶籽油不皂化物中分离三萜醇以及从茶籽饼中分离黄酮和黄酮醇苷[3]的报道。国内有油茶总皂苷具有抗氧化及清除自由基的能力[4]以及茶籽毛油中存在极性抗氧化物质[5]的报道，但从油茶籽壳中提取黄酮并对其进行抗氧化研究截至发稿前未见报道。黄酮类化合物是一类在植物界广泛分布的多酚类天然产物。有研究表明，黄酮类化合物具有抗氧化、抗癌、抗心脑血管疾病、抗炎、抗病毒、免疫调节等多种生理功能及药理作用，其提取物已用于食品、药品、化妆品等中[6]。因此开发利用油茶壳中的黄酮类化合物具有重要的现实意义。为了利用油茶壳中的黄酮类物质，本文借助超声波辅助萃取油茶籽壳总黄酮，通过1，1-二苯基-2-苦基苯肼(DPPH·)法﹑铁离子还原法(FRAP)与羟自由基(·OH)清除能力3个反应体系来评价其抗氧化能力，为油茶籽壳中有效成分的开发利用提供参考。

　　1材料与方法

　　1.1材料油茶籽，2006年11月份采购。将油茶籽敲碎，分离的油茶壳晒干，用粉碎机粉碎，过40目筛。

　　芦丁标准品，中国医药上海化学试剂公司;竹叶提取物(黄酮含量：32%)，浙江安吉圣氏生物制品有限公司;1，1-二苯基-2-苦基苯肼自由基(1，1-diphenyl-2-picrylhydrazyl)(DPPH);无水乙醇、氢氧化钠、亚硝酸钠、硝酸铝等均为分析纯试剂。

　　1.2仪器

　　7530G分光光度计，惠普上海分析仪器公司出品;KQ-250B型超声波清洗器，昆山市超声仪器有限公司出品;电动粉碎机，温岭市大德中药机械有限公司出品。

　　1.3试验方法1.3.1油茶籽壳总黄酮的工艺流程及乙醇提取优化油茶籽壳总黄酮工艺流程：油茶籽壳→晒干→粉碎→溶剂浸泡→超声波辅助萃取→抽滤→定容→定量分析。

　　准确称取1.0 g油茶籽壳粉于50 mL三角烧瓶中，加入一定量的乙醇，在一定温度下超声波提取一定时间，趁热减压抽滤，用相应浓度的乙醇溶液定容于50 mL容量瓶中，即为待测液。

　　1.3.2油茶籽壳总黄酮的分级提取选用极性由弱到强的4种溶剂———石油醚、纯乙醇、60%乙醇、水，分别提取油茶籽壳中的总黄酮。具体操作：准确称取8.0 g油茶壳粉于500 mL三角瓶中，按物料比1：30加入提取溶剂，50℃下超声波提取45 min，趁热减压抽滤，用相应浓度的溶液定容于300 mL容量瓶中，即为待测液。

　　1.3.3总黄酮标准溶液的制备和标准曲线绘制以五氧化二磷为干燥剂，减压干燥(60℃，0.09MPa)至恒重的芦丁标准品0.077 g，用60%乙醇溶解，定容至250 mL，摇匀，得0.2926 mg/mL的标准液，放入低温暗箱内，及时检测。分别吸取标准液1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 mL于25 mL容量瓶中，用60%乙醇添至10 mL，加入5%NaNO2溶液1.0mL，摇匀，放置6 min，再加入10%Al(NO3)3溶液1.0 mL，6 min后加入4%NaOH溶液10 mL，混匀，用30%乙醇定容至刻度，摇匀，放置15 min后，在波长510 nm处测定吸光度A，得芦丁含量y(mg/mL)与吸光度A之间的回归方程为：y=0.113A+0.0016(R2=0.9993)。

　　1.3.4提取物总黄酮的测定取本文1.3.2节中待测液1 mL于25 mL容量瓶中，其它操作同1.3.3节，测定其在510 nm处的吸光度A。由回归方程计算黄酮提取率。

　　总黄酮提取率(%)=[黄酮类化合物质量(g)/原料质量(g)]×100%得率(%)=[提取物质量(g)/原料质量(g)]×100%提取物干基黄酮含量(%)=[黄酮类化合物质量(g)/提取物质量(g)]×100%1.3.5抗氧化能力的测定方法1.3.5.1清除DPPH·活性的研究[7-8]准确称取DPPH·2.5 mg，用甲醇定容到100 mL，使用时稀释为不同浓度，测定515 nm波长处的吸光度，制作标准曲线。DPPH·残留率的计算公式：[DPPH·]REM=[DPPH·]T/[DPPH·]T=0×100%式中，[DPPH·]REM———DPPH·残留率(%);[DPPH·]T———为自由基清除过程中某一时刻DPPH·的质量浓度(μg/mL);[DPPH·]T=0———DPPH·的原始质量浓度(μg/mL)。

　　1.3.5.2 FRAP法测定提取物的抗氧化活性参照Benzie与Strain的方法[8]。操作步骤：取适量提取物溶液，加入1.8 mL TPTZ工作液(由0.3 mol/L醋酸盐缓冲液25 mL、10 mmol/L TPTZ溶液2.5mL、20 mmol/L FeCl3溶液2.5 mL组成)，混匀后37℃反应10 min，测定波长593 nm处溶液的吸光度。由吸光度的大小判断溶液的还原能力。试样还原活性(FRAP值)以达到同样吸光度所需FeSO4的毫摩尔数表示。FRAP值越大，表明样品的还原能力越强，即抗氧化活性越强。

　　1.3.5.3清除羟基自由基(·OH)试验[9]反应体系：1 mL 8.8 mmol/L H2O2、1 mL 9 mmol/L FeS-O4、1 mL 9mmol/L水杨酸-乙醇、各种浓度的油茶籽壳提取物溶液1 mL。在反应体系中加入H2O2启动反应，37℃反应0.5 h，以蒸馏水为参比，在波长510 nm处测定各浓度的吸光度。考虑到油茶籽壳提取物溶液本身的吸光值，以1 mL 9 mmol/LFeSO4、1 mL 9 mmol/L水杨酸-乙醇、1 mL不同浓度的油茶籽壳提取物溶液和1 mL蒸馏水作为油茶籽壳提取物溶液的本底吸收值。清除率计算公式：清除率(%)=[AO-(AX-A′O)]/AO×100式中：AO———空白对照液的吸光度;Ax———加入油茶籽壳提取物溶液后的吸光度;A′O———不加显色剂H2O2油茶籽壳提取物溶液本底的吸光度。

　　2结果与分析

　　2.1油茶籽壳总黄酮最佳提取工艺参数的优化在单因素试验基础上，对影响油茶壳总黄酮提取率的因素：乙醇浓度、料液比、超声波提取温度、提取时间做L9(34)正交试验，研究油茶籽壳总黄酮提取工艺。

　　表2中的数据表明，各因素对总黄酮提取效果影响顺序依次为乙醇浓度>料液比>提取温度>提取时间。通过正交试验、方差分析及各个处理间差异显著性检验，4种因素的最佳组合为A2B3C1D3，即60%乙醇，温度40℃，料液比1：30，超声波提取45 min。在此条件下测得油茶壳中总黄酮的提取率为1.71%。

　　参考文献

　　[1]黎先胜.我国油茶资源的开发利用研究[J].湖南科技学院学报，2005，26(11)：127-129.

　　[2]李振纪.油茶[M].北京：农业出版社，1980：4-9.

　　[3]Toshikazu S，Jiro A，Atsuko Y，et al.Two flavonol glycosides from seeds of camellia sinensis[J].Phytochemistry，1991，30(3)：991-995.

　　[4]吕晓玲，邱松山，孙晓侠，等.油茶总皂苷的抗氧化及清除自由基能力初步研究[J].食品科学，2005，26(11)：86-89.

　　[5]刘雳，赵正惠.茶籽毛油中极性抗氧化物质的研究[J].中国粮油学报，2002，17(3)：4-9.

　　[6]潘国庆，梁永欣.黄酮类化合物结构与抗氧化活性关系研究[J].研究与开发，2005，12(3)：28-30.

　　[7]Sánchez-Moreno C，Larrauri J A，Saura-Calixto F A.A procedure to measure the antiradical e?ciency of polyphenols[J].Journal of the Science of Food and Agriculture，1998，76(2)，270-276.

　　[8]Benzie I F F，Strain J J.The ferric reducing ability of plasma as a measure of‘antioxidant power’：the FRAP assay

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